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安捷倫(Prozyme) 2-AB染料高通量糖型分析平臺

2021-04-29
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安捷倫(Prozyme) 2-AB染料高通量糖型分析平臺

安捷倫(Prozyme)?2-AB染料高通量糖型分析平臺


摘要

本應用簡報介紹由生物治療性糖蛋白進行N-糖鏈前處理,用于釋放糖鏈分析。N-糖鏈分析對治療性蛋白質的開發(fā)和生產十分重要,因為糖鏈組成可直接影響產品的安全性和有效性。本方案介紹Agilent AdvanceBio Gly-X 2-AB Express試劑盒在使用PNGase F釋放糖鏈、通過還原胺化進行標記、在兩小時內(無需一整天或更長時間)凈化游離染料方面的應用。所用標記是2-氨基苯甲酰胺 (2-AB),因其完善的用途以及與大量歷史糖鏈分析數(shù)據的一致性而得到廣泛認可。


前言

糖基化是許多生物治療蛋白質的共同特 征,可以影響藥代動力學、藥效學和免疫 原性1,通常作為關鍵質量屬性2。因此,必須在整個開發(fā)和生產過程中仔細表征和監(jiān)測生物治療性糖基化。通常在分析之前對糖鏈進行衍生化,因為它們本身不吸收紫外線或熒光,且難以電 離得到MS檢測。廣泛使用的熒光標記屈指可數(shù),包括 2-AB 和 2-AA,它們通過還原胺化修飾釋放的N-糖鏈3。最近推出了具有更高的熒光和MS靈敏度的標記4


早期的2-AB標記方案通常較長,需要經歷多個長時間的溫育期。這不僅耗費了用戶的大量時間,還使用戶無法快速獲得結果并根據這些結果做出決策。如果不經過長時間溫育,去糖基化通常不完全,因此常需要過夜消解。通過還原胺化固定2-AB標記是標記前糖鏈干燥的前一步,標記反應通常需要溫育數(shù)小時。此外,液相色譜分析前用于去除過量2-AB試劑的舊款凈化柱操作繁瑣,不適用于高通量或自動化工作流程。


Agilent AdvanceBio Gly-X 2-AB Express 試劑盒的方案包括N-糖鏈樣品前處理的所有高級步驟:變性、去糖基化、標記和 樣品凈化,如圖 1 所示。


實驗部分

材料

HPLC級乙腈購自Sigma-Aldrich。水經由Milli-Q A10水純化系統(tǒng) (Millipore) 純化。

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圖 1. 用于釋放和標記 N-糖鏈的AdvanceBio Gly-X 2-AB Express工作流程


N-糖鏈樣品前處理

使用AdvanceBio Gly-X 2-AB Express試劑盒(部件號 GX96-2AB)進行標記N-糖鏈 的樣品前處理。圖2展示了試劑盒組成。 AdvanceBio Gly-X N-糖鏈樣品前處理包含一系列酶和化學步驟,從目標蛋白質的變性開始(圖 3)。加入變性試劑,將樣品在 90 °C 下溫育3分鐘。蛋白質的有效去折疊有助于PNGase F酶僅在5分鐘內對N-糖鏈實現(xiàn)高效的溶液中酶切4。PNGase F對N-連接糖鏈具有特異性,因此僅有N-糖鏈從蛋白質中去除(圖 4),而任何O-連接糖鏈和非酶糖基化仍連接在蛋白質上。


標記和凈化步驟在HILIC型固相載體 上進行。在上樣到固定相之前,將釋放N-糖鏈在溶液中轉化為 -OH 形式,然后經 2-AB標記試劑標記,并將固定相在65 °C下溫育1小時(圖 5)。標記完成后,通過一系列乙腈清洗沖洗掉過量試 劑。然后用水洗脫標記 N-糖鏈(圖 6)。 基質上標記省去了在2-AB標記之前干燥釋放糖鏈的步驟。

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圖2.AdvanceBio Gly-X 2-AB Express N-糖鏈樣品前處理試劑盒組成


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圖3. 首先使樣品蛋白質變性,以便在后續(xù)步驟中有效去糖基化


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圖4. 采用 PNGase F從蛋白質上快速剪切N-糖鏈


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圖5. 將樣品上樣到真空凈化板上的HILIC型固定相擔體上。然后將2-AB標記試劑加入固定相擔體中,溫育1小時。無需后續(xù)干燥步驟


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圖6. 沖掉過量標記試劑,從固體固定相中洗脫標記糖鏈


儀器

使用安捷倫液相色譜系統(tǒng)中的Agilent AdvanceBio糖譜分析色譜柱分析樣品,系統(tǒng)包括以下模塊:

??Agilent 1290 Infinity II 高速泵(G7120A)

??Agilent Infinity Multisampler(G7167B)
??Agilent 1290 Infinity II 高容量柱溫箱(G7116B)
??Agilent 1260 Infinity 熒光檢測器(G1321B)

軟件

??Agilent MassHunter 采集軟件
??Agilent MassHunter 定性分析軟件

結果與討論
采用 LC/FLD 分析 MabThera 和 Enbrel 2-AB N-糖鏈樣品。代表性色譜圖如圖 7 所示。MabThera 具有更簡單的糖基化模 式,Enbrel 則表現(xiàn)出更高的唾液酸化糖鏈水平。樣品前處理的重現(xiàn)性十分重要,因 此可以比較不同生產批次的樣品。待測量 的變異性需要是真正來源于樣品的差異, 而不是樣品處理或分析造成的人為因素。


表 1. 液相色譜方法


參數(shù)
色譜柱Agilent AdvanceBio 糖譜分析色譜柱,2.1×150mm,1.8μm(部件號 859700-913)
柱溫40 °C
流動相A) 50 mmol/L 甲酸銨,pH4.5;
B) 乙腈?
流速0.5 mL/min
梯度程序時間 (min)??? %B??????? 流速 (mL/min)?
0.0? ? ? ? ? ? ? ? 82? ? ? ? ?0.4
2.0??????????????? 82???????? 0.4
2.5??????????????? 77???????? 0.4
48.0? ? ? ? ? ? ? 62???????? 0.4
49.0? ? ? ? ? ? ??40???????? 0.4
51.5? ? ? ? ? ? ? 40???????? 0.4
52.0? ? ? ? ? ? ??82???????? 0.4
54.0? ? ? ? ? ? ? 82???????? 0.6
58.0? ? ? ? ? ? ? 82???????? 0.6
58.5? ? ? ? ? ? ??82???????? 0.4
進樣量1μL(相當于0.4μg 蛋白質中的糖鏈)
檢測器Agilent 1290 Infinity II FLD?
激發(fā)波長260nm
發(fā)射波長430nm


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圖7. 顯示從A) MabThera和B) Enbrel分離2-AB標記的N-糖鏈的代表性色譜圖

表2 顯示了MabThera的三份樣品中檢出的主要N-糖鏈種類的相對峰面積百分比。表中列出了平均百分比峰面積以及標準偏差和相對標準偏差 (%CV)。除了豐度最低的糖鏈外,樣品前處理之間的差異都很小。檢測限附近的精度較難維持,因此預計這些峰的差異會更大。


如果任何研究人員要更改樣品前處理方法,獲得的數(shù)據必須與原方法等同,或在某種程度上優(yōu)于原方法的結果。雖然也能用其他標記化學品,但繼續(xù)使用2-AB的主要因素是能夠將結果與使用其 他2-AB標記方案獲得的舊數(shù)據進行比 較。圖8顯示了Enbrel的三份重復樣品中檢出的N-糖鏈的相對峰面積百分比。 使用AdvanceBio Gly-X 2-AB Express 和 ProZyme GlykoPrep 2-AB(ProZyme提供的前一代2-AB樣品前處理標記物)進行樣品前處理,多次前處理之間的相對豐度相差無幾。


表2. MabThera 三份樣品中主要N-糖鏈種類的相對峰面積百分比


糖鏈?RT相對峰面積百分比
123均值?標準偏%CV
G0F-N?10.320.560.570.570.570.011.02
G0?10.811.091.010.981.030.065.54
G0F?12.6239.8539.3139.3339.50.310.78
Man513.120.740.620.690.680.068.82
G1[6]14.470.660.60.620.630.034.88
G1F[6]?16.2734.6534.8134.6734.710.090.25
G1F[3]?16.9610.6510.4710.610.570.090.88
G2F20.8910.1510.7810.8310.590.383.58
A1F24.451.131.261.171.190.075.61
A2F?28.440.520.570.540.540.034.63



結論
采用Agilent? AdvanceBio Gly-X 2-AB Express可在兩小時內完成完全的N-糖鏈樣品前處理,而舊方法則需要耗費一整 天,包括過夜溫育和標記前干燥在內。各 種糖蛋白生成的數(shù)據具有高度重現(xiàn)性,并 與采用舊款2-AB樣品前處理方法獲得的數(shù)據一致。
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圖8. 采用AdvanceBio Gly-X 2-AB Express試劑盒得到的樣品生成的數(shù)據與采用舊方法(如 ProZyme GlykoPrep 2-AB)得到的樣品數(shù)據相差無幾,此處展示的是來自Enbrel的N-糖鏈。所有數(shù)據均n=3


參考文獻
1.?Liu, L. Antibody Glycosylation and its Impact on the Pharmacokinetics and Pharmacodynamics of Monoclonal Antibodies and Fc-Fusion Proteins. J. Pharm. Sci. 2015, 104(6), 1866–1884
2.?Reusch, D.; Tejada, M. L. Fc Glycans of Therapeutic Antibodies as Critical Quality Attributes. Glycobiology 2015, 25(12), 1325–1334
3.?Ruhaak, L. R.; et al. Glycan Labeling Strategies and Their Use in Identification and Quantification. Anal. Bioanal. Chem. 2010, 397(8), 3457–3481
4.?Kimzey, M.; et al. Development of a?5-Minute Deglycosylation Method for High Throughput N-Glycan Analysis by Mass Spectrometry. ProZyme Technical Note, Bulletin 4001, Rev E




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